1、前言

細胞毒性評估材料浸提液中潛在的生物活性物質(zhì)對培養(yǎng)的哺乳動物細胞（）毒性反應(yīng)。

其原理為黃色水溶液MTT在活細胞內(nèi)代謝性還原，生成不可溶的甲臜?；罴毎臄?shù)目與甲臜溶于醇類后用光度計測定的色度相關(guān)。

2、試驗依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)

2.1 GB/T 16886.5 -2022 醫(yī)療器械生物學(xué)評價 第5部分：體外細胞毒性試驗；

2.2 ISO 10993-5:2009 Biological evaluation of medical devices—Part 6: Tests for in vitro cytotoxicity。

3、試驗系統(tǒng)

L929細胞。

4、試驗樣品制備

依據(jù)GB/T 16886.12制備浸提液。

5、試驗步驟

5.1 細胞培養(yǎng)準(zhǔn)備

采用酶促消化（胰蛋白酶/EDTA）將培養(yǎng)細胞從培養(yǎng)瓶中移出，細胞懸液在200g離心3min。用培養(yǎng)基重懸細胞懸液，調(diào)整密度為1×105個細胞/Ml，采用多通道移液器將100μL培養(yǎng)基加到96孔組織培養(yǎng)微量滴定板的外圍孔中（=1×104個細胞/孔）。

細胞孵育24h以形成半?yún)R合單層。培養(yǎng)物在含5±1%的CO2培養(yǎng)箱中(37℃±1℃，濕度>90%)培養(yǎng)（24±2）h，使細胞生長形成單層近融合的細胞層。

5.2 接觸培養(yǎng)

培養(yǎng)24h后，從板孔中吸出培養(yǎng)液，另加入100μL的測試樣品浸提液、對照樣品浸提液、空白對照液和陽性對照液，所有劑量需要做至少六個平行。將空白加到96孔板的左（第2列）、右（第11列）兩側(cè)。然后在(37±1)℃，含有5±1%的CO2，濕度>90%的環(huán)境下培養(yǎng)24h±2h。

5.3 觀察

繼續(xù)培養(yǎng)24h后，在相差顯微鏡下檢查每個板，判定細胞接種系統(tǒng)誤差和對照與試驗組細胞的生長特性。記錄試驗樣品浸提液細胞毒性作用導(dǎo)致的細胞形態(tài)學(xué)方面的改變，但這些記錄不用與任何細胞毒性定量測定。對照細胞的不良生長特性可表明實驗誤差，并且可能會因此放棄該試驗。

5.4 添加MTT

檢查平板板孔細胞生長情況后，小心地從板孔中吸除培養(yǎng)介質(zhì)，在每個測試板孔中加入50μL的MTT溶液（用不含酚紅的完全MEM培養(yǎng)液配置成1mg/mL），在(37±1)℃條件下培養(yǎng)(2±0.2)h。棄去MTT溶液，每孔加入100μL異丙醇溶解甲臜，震蕩平板，然后在570nm波長下測量每孔的吸光度值（參照波長650nm）。

5.4 數(shù)據(jù)分析

活細胞數(shù)減少導(dǎo)致了樣品中代謝活性降低，這直接與生成的藍紫色甲臜量有關(guān)。測試樣品與空白對照（細胞直接與浸提介質(zhì)接觸）比較細胞存活率的降低可用以下公式計算：

式中：OD570e---測試樣品、陽性對照、陰性對照各組測得平均吸光度值。

OD570b---空白對照組（細胞直接與浸提介質(zhì)接觸）平均吸光度值。

存活率較低時，試驗樣品潛在的細胞毒性較高。如存活率下降＜空白的70%，則魚油潛在的細胞毒性。試驗樣品50%浸提液的存活率相同或較高，否則宜重復(fù)試驗。